miR-126对人晶状体上皮细胞凋亡的影响

2018-05-11 00:58
中国老年学杂志 2018年8期
关键词:晶状体白内障阴性

汪 静

(武汉市艾格眼科医院,湖北 武汉 430000)

随着我国人口老龄化加剧,年龄相关性白内障发病率明显提升〔1〕,但其发病机制仍未明确。目前研究认为,晶状体上皮细胞凋亡是白内障发病的始动环节和病理生理改变基础〔2〕。miRNA是一类内源性具有调控作用的非编码RNA,可通过介导靶基因表达来发挥作用。相关研究已发现多种miRNA通过对人晶状体上皮细胞凋亡发挥调控作用,影响白内障进程〔3〕。动物实验表明,miR-126参与调控大鼠继发性白内障的发病过程〔4〕,但对人白内障形成的影响和作用机制仍未明确。锌指蛋白kruppel样因子(KLF)6基因可参与哺乳动物体内细胞凋亡、衰老等生理过程的调节,缓解多种年龄相关性疾病进展〔5〕。相关研究显示,在人晶状体上皮细胞氧化损伤状态下,上调KLF6表达水平可有效抑制细胞凋亡〔6〕,可见KLF6能够抑制白内障病情发展。本次研究使用miR-126模拟物、抑制物转染人晶状体上皮细胞系HLEB3,分析miR-126对HLEB3凋亡的影响并探讨其作用机制。

1 材料与方法

1.1材料与试剂 人晶状体上皮细胞系HLEB3购于上海晶都生物技术有限公司;DMEM培养基、胎牛血清购于北京雅安达生物技术有限公司;脂质体2000购于上海依赫生物科技有限公司;Trizol试剂盒、SYBR®Green Kit试剂盒购于宝日医生物技术有限公司;兔抗人KLF6多克隆抗体、小鼠免疫球蛋白(Ig)G二抗购于北京安必奇生物科技有限公司。

1.2方法

1.2.1细胞培养与转染 HLEB3培养于含10%胎牛血清的DMEM完全培养基中,放入37℃ 5%CO2孵箱中培养,取对数生长期的HLEB3接种到6孔板,调整细胞浓度至40%~60%并进行转染。使用脂质体2000分别将100 nmol/L的miR-126 mimic(模拟物组)、miR-126 mimic Control(模拟物阴性对照组)、miR-126 inhibitor(抑制物组)、miR-126 inhibitor Control(抑制物阴性对照组)转染到HLEB3中,向每个培养孔中加入不含胎牛血清的DMEM培养基至终浓度体积为2 ml,转染48 h后收集各组细胞。

1.2.2氧化凋亡模型构建 向不含胎牛血清的DMEM培养基中加入3%H2O2配制成终浓度为0.3 mmol/L的H2O2DMEM培养基,分别加入到转染后的各组HLEB3中,同时设置凋亡模型组(使用未转染的HLEB3构建凋亡模型)和正常HLEB3组(用含10%胎牛血清的DMEM培养基正常培养),各组均放入37℃ 5%CO2孵箱中培养12 h,收集细胞。透射电解下观察凋亡模型组和正常HLEB3组的细胞形态,验证凋亡模型是否成功建立。

1.2.3qRT-PCR检测 Trizol试剂盒收集各组细胞,按说明书要求提取总RNA,逆转录得到cDNA,使用SYBR®Green Kit试剂盒,RNU6B为内参照检测miR-126的相对表达量,β-actin为内参检测KLF6 mRNA的相对表达量。miR-126、RNU6B、KLF6、β-actin的特异性上、下游引物由金斯瑞生物科技有限公司合成。反应条件:95℃ 40 s,95℃ 10 s,55℃ 35 s,共40个循环,2-△△Ct法计算miR-126、KLF6 mRNA的相对表达量。

1.2.4Western印迹检测 取各转染组HLEB3,加入RIPA细胞裂解液静置40 min,4℃下12 000 r/min恒温离心30 min、取上清;行十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE),转移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜,5%脱脂奶粉室温封闭2 h,加入兔抗人KLF6多克隆抗体(1∶200),4℃缓慢摇动孵育过夜,加入HRP标记的小鼠IgG二抗(1∶1 000),室温孵育2 h,以GADPH为内参,采用Image J计算目标各带灰度值。

1.2.5细胞凋亡检测 胰蛋白酶消化各转染组细胞,磷酸缓冲液洗涤、2 000 r/min离心10 min、弃上清。使用结合缓冲液将细胞浓度调整至1×105/ml,滴加5 μl Annexin V-FITC/PI双染试剂,常温下避光静置20 min,将细胞转移至冰上,分别加入500 μl 的结合缓冲液,混合均匀后放入流式细胞仪中检测各转染组HLEB3凋亡率。

2 结 果

2.1HLEB3凋亡模型形态学观察及miR-126表达情况 电镜下细胞形态学观察显示,正常HLEB3组形态规则,呈椭圆形,细胞膜结构完整,表面可见较多绒毛突起,细胞核清晰,染色体分布均匀,胞质中内质网和线粒体丰富,无凋亡改变,见图1A、图1B;凋亡模型组表面微绒毛明显减少,细胞核体积减小且形状不规则,核内染色质汇集,存在凋亡特异性标志物-凋亡小体,见图1C、图1D。凋亡模型组中miR-126相对表达量为3.39±0.61,明显高于正常HLEB3组(1.20±0.42,P<0.01)。

图1 正常HLEB3和凋亡模型透射电镜下形态表现(×6 300)

2.2HLEB3转染效率评定 转染48 h后收集细胞,qRT-PCR检测各组miR-126表达情况。结果显示,模拟物组miR-126相对表达量(89.61±12.95)明显高于模拟物阴性对照组(3.75±0.82,P<0.01);抑制物组miR-126相对表达量(0.52±0.15)明显低于抑制物阴性对照组(3.16±1.24,P<0.01)。

2.3miR-126对HLEB3凋亡的影响 流式细胞术检测显示,模拟物组HLEB3凋亡率〔(0.62±0.11)%〕低于模拟物阴性对照组〔(1.45±0.17)%,P<0.05〕;抑制物组HLEB3凋亡率〔(2.48±0.45)%〕高于抑制物阴性对照组〔(1.52±0.13)%,P<0.05〕。

2.4miR-126靶基因预测 使用目前引用次数最高的miRNA靶基因预测软件(miRanda、miRecords、miRWalk)对 miR-126 靶基因进行预测,KLF6基因与miR-126存在潜在结合位点,可能通过靶向调控KLF6来影响HLEB3凋亡。

2.5miR-126对HLEB3中KLF6 mRNA和蛋白表达的影响 模拟物组HLEB3中KLF6 mRNA相对表达量(0.72±0.17)明显低于模拟物阴性对照组(1.03±0.05);抑制物组KLF6 mRNA相对表达量(1.95±0.20),明显高于抑制物阴性对照组(1.10±0.09,均P<0.05)。模拟物组HLEB3中KLF6 蛋白相对表达量(1.95±0.58)明显低于模拟物阴性对照组(3.16±0.75);抑制物组KLF6 蛋白相对表达量(4.82±0.37)明显高于抑制物阴性对照组(3.20±0.59,均P<0.05)。见图2。

1为模拟物组,2为模拟物阴性对照组,3为抑制物阴性对照组,4为抑制物组图2 各组KLF6蛋白表达的Western印迹电泳图

3 讨 论

随着我国人口老龄化加剧,白内障发病率和总患者数逐年提升,探寻白内障发病机制,对病情防治具有重要意义〔7〕。miRNA在哺乳动物中具有高度同源性,能够与其靶基因配对结合并抑制翻译过程、下调靶基因表达水平,导致基因沉默。最新研究发现miR-126不仅存于肺癌、肝细胞癌、卵巢癌等多种癌组织中,还分布于哺乳动物眼部,在晶状体、角膜上皮细胞中〔8〕。动物实验发现,白内障大鼠的晶状体中miR-126是表达上调最明显的miRNA之一〔9〕,提示其参与白内障进程的可能性较大,但具体机制仍未明确。

本研究显示,在HLEB3凋亡模型中,miR-126表达水平明显高于正常HLEB3;进一步在HLEB3凋亡模型中调节miR-126的表达水平,发现上调miR-126表达会明显促进HLEB3凋亡,下调miR-126表达则明显降低HLEB3凋亡。笔者通过靶基因预测软件得到KLF6基因为miR-126的潜在结合位点,KLF6是一种多功能转录调节因子,在组织抗氧化损伤、维持细胞结构完整和稳定性方面发挥重要作用。相关研究发现,KLF6基因在成年大鼠和人晶状体上皮细胞中均存在高表达〔10〕。本次研究对miR-126可能通过潜在靶基因KLF6调控HLEB3凋亡过程的研究发现,上调miR-126表达会明显降低KLF6基因表达水平,而下调miR-126表达会提升KLF6基因表达水平,提示KLF6基因表达与miR-126呈负相关,miR-126可通过靶向作用于KLF6基因来调控HLEB3凋亡,进而在白内障发病机制中发挥作用,可成为白内障治疗的潜在新靶点。

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