彩云木叶化学成分及其抗炎活性研究

2020-11-10 03:48邹情雅路艳霞刘梦元李路军PaulPar
天然产物研究与开发 2020年10期
关键词:正己烷乙酸乙酯硅胶

阳 航,邹情雅,陈 宇,路艳霞,刘梦元,李路军,3,4*,Paul W.Paré*

1药物高通量筛选国家与地方联合工程研究中心,生物催化与酶工程国家重点实验室,中药生物技术湖北省重点实验室,湖北大学,武汉 430062;2美国德州理工大学 化学与生物化学系,拉伯克 79409;3甘肃百草中药材种植有限公司,兰州 730102;4深圳市老年医学研究所,深圳 518020

彩云木Synadeniumgrantii为大戟科(Euphorbiaceae)聚苞大戟属Synadenium植物,是一种原产于非洲东部多汁灌木,后来作为一种观赏植物引入美洲和欧洲[1],又称“非洲乳木”。该木树枝折断或剥离茎皮,会产生白色乳胶汁[2]。临床报告指出接触该植物的乳胶汁,脸和脖子产生象火烧一样的刺激感[3]。巴西民间常把该植物乳胶汁作为一种传统药物用于多种疾病的治疗,如过敏,胃肠紊乱[4],肿瘤[5]等。该植物的叶也具有广泛的药理活性,研究表明彩云木叶乙醇提取物具有明显的镇痛、抗炎[6],抗菌[7]、抗肿瘤、抗血管生成[8]和改善痛经作用[9]。Hassan等[10]发现其叶的氯仿提取物具有肿瘤细胞毒和抗寄生虫作用,并从中得到两个新的二萜酯类成分。Andersen等[11]从中分离得到多个花色素芹菜糖苷类成分。为了深入研究该植物化学资源,继续寻找具有抗炎活性的化学成分,本研究对其叶的二氯甲烷-甲醇(1∶1)提取物的化学成分及其体外抗炎活性进行了研究,以探明其抗炎生物活性物质基础。

1 材料与方法

1.1 仪器与材料

JEOL ECS 400 MHz核磁共振仪(Peabody,MA,USA);ESI-MS(API2000三重四级杆质谱仪,Applied Biosystems,Foster City,CA);分析和半制备型HPLC为Agilent 1100 HPLC(DAD检测器);色谱柱为Zorbax SB-C18(Agilent,4.6 mm × 250 mm×5 μm,1 mL/min;9.4 mm × 250 mm×5 μm,3 mL/min);紫外分析仪(Spectroline,Westbury,NY,USA);Buchi R-114旋转蒸发仪;CO2培养箱(德国Heraeus公司); 超净工作台(中国苏州安泰空气技术有限公司); XDS-1B型倒置显微镜(中国北京佳源兴业有限公司);硅胶60(0.040~0.063 mm,EMD Millipore,Billerica,MA,USA);Sephadex LH-20(GE healthcare Bio-sciences AB);MCI Gel CHP20P;大孔树脂HP-20(日本,三菱);薄层硅胶板GF 254(Merck KGaA,Darmstadt Germany),正己烷、乙酸乙酯、氯仿、甲醇(Fisher Chemical,Certified ACS,Fair Lawn,NJ,USA);其他试剂为分析纯; 二甲基亚砜(DMSO)、噻唑蓝(MTT)、脂多糖(LPS)(Sigma 公司);DMEM培养基购于HyCloneTM公司;胎牛血清(FBS)购于浙江天杭生物科技有限公司;NO检测试剂盒(上海碧云天生物科技有限公司)。

样品原料由埃及国家研究中心Mohamed-Elamir F.Hegazy教授采集并鉴定为SynadeniumgrantiiHook F.的干燥叶,标本(编号20161201)存放于美国德州理工大学化学与生物化学系Paul W.Paré教授实验室。小鼠单核巨噬细胞RAW264.7由药物高通量筛选国家与地方联合工程研究中心提供。

1.2 提取与分离

干燥的彩云木叶(900 g),适当粉碎,用3 L CH2Cl2-MeOH(1∶1,V/V)混合液室温浸渍提取3次,合并提取液减压浓缩除去溶剂,得提取浸膏63.5 g。取上述浸膏46.9 g 经硅胶柱色谱(0.040~0.063 mm)分离,以正己烷-乙酸乙酯系统梯度洗脱(100∶1→1∶100),得62个流分F1~F62。取流分F15经硅胶柱色谱,正己烷-乙酸乙酯(6∶1)洗脱后再经Sephadex LH-20柱用CH2Cl2-MeOH(1∶1)洗脱得化合物1(20.0 mg),流分F19经硅胶柱色谱由正己烷-乙酸乙酯(20∶1→4∶1)洗脱得化合物2(10.2 mg)。流分F26经硅胶柱色谱/正己烷-乙酸乙酯(4∶1)得化合物3(3.6 mg),流分F30经硅胶柱色谱用正己烷-乙酸乙酯(4∶1)洗脱后得3个主要次级流分F26a-F26c,F26a经重结晶得化合物4(50.0 mg),F26c再经硅胶柱色谱/正己烷-乙酸乙酯(10∶1)得化合物5(40.1 mg);流分F38上Sephadex LH-20柱经CH2Cl2-MeOH(1∶1)洗脱得2个主要次级流分F38a和F38b, F38a经RP-HPLC/乙腈-水(4∶1→9∶1)梯度洗脱得化合物6(15.3 mg)。流分F60经硅胶柱由CH2Cl2-MeOH-H2O(200∶10∶1)洗脱得3个次级流分F60a~F60c,F60a经再硅胶柱分离得化合物8(30.6 mg),F60c经Sephadex LH-20柱MeOH洗脱得化合物7(8 mg)。流分F62用大孔吸附树脂依次用纯水、50%和95%乙醇水溶液洗脱,取50%乙醇洗脱液经硅胶柱由CH2Cl2-MeOH(20∶1→5∶1)梯度洗脱得4个次级流分F62a~F62d,F62a经RP-HPLC用MeOH-H2O梯度洗脱得化合物9(9.4 mg),F62d经Sephadex LH-20柱以MeOH洗脱得化合物10(7.0 mg)。

1.3 体外细胞毒和抗炎活性筛选实验

1.3.1 细胞毒实验

取对数生长期RAW264.7小鼠巨噬细胞按1×105个/mL, 200 μL/孔接种于96孔板中, 用含10% FBS 的 DMEM 培养基于37 °C、5% CO2培养箱中培养24 h后弃培养基,分别加入不同浓度的部分单体化合物至0、3.125、6.25、12.5、25、50 μM继续培养24 h,每组设3个复孔,MTT法测定细胞存活率。

1.3.2 抗炎活性筛选

取单体化合物分别用DMSO配制成50 μM的溶液作为储备液,加药时用无血清培养基稀释。同样条件培养细胞24 h后弃培养基,加入100 μL浓度为0、3.125、6.25、12.5、25、50 μM的系列单体化合物溶液孵育4 h,每组设3个复孔,加入终质量浓度为1 μg/mL的LPS刺激细胞继续培养20 h。离心, 取上清液,移至新的96孔板,按照试剂盒说明书规定的方法,在540 nm波长下用酶标仪测定NO,计算最大半数抑制浓度(IC50)值。

2 实验结果

2.1 结构鉴定

化合物1白色针晶(正己烷-乙酸乙酯);mp.179~181 ℃,ESI-MS:m/z465 [M+K]+。1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ:0.75(3H,s,H-23),0.83(3H,s,H-25),0.89(3H,s,H-24),0.93(6H,s,H-26,27),0.94(3H,s,H-28),1.03(3H,s,H-29),1.08(3H,s,H-30),3.46(1H,dd,J= 5.6,11.0 Hz,H-3),4.86(1H,s,H-19);13C NMR(100 MHz,CDCl3)δ:142.9(C-18),129.8(C-19),76.4(C-3),51.1(C-5),49.3(C-9),43.5(C-14),41.1(C-8),38.9(C-4,13),38.5(C-1),37.8(C-16),37.7(C-22),37.5(C-10),34.6(C-7),34.5(C-17),33.5(C-21),32.3(C-20),31.5(C-29),29.3(C-30),28.4(C-23),27.6(C-15),26.4(C-12),25.6(C-2),25.4(C-28),22.3(C-26),21.1(C-11),18.4(C-6),16.7(C-25),16.2(C-24),14.8(C-27)。以上数据与文献[12]基本一致,故化合物1鉴定为日尔曼醇。

化合物2白色针晶(正己烷-乙酸乙酯);mp.116~118 ℃,ESI-MS:m/z465 [M+K]+。1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ:0.76(3H,s,H-18),0.79(3H,s,H-29),0.86(3H,s,H-30),0.89(3H,d,J= 6.4 Hz,H-2l),0.96(3H,s,H-28),1.00(3H,s,H-19),1.60(3H,s,H-26),1.68(3H,s,H-27),3.24(1H,dd,J= l1.8,4.6 Hz,H-3),5.10(1H,t,J= 7.0 Hz,H-24);13C NMR(100 MHz,CDCl3)δ:134.2(C-9),133.7(C-8),131.1(C-25),125.4(C-24),79.2(C-3),51.1(C-17),50.2(C-5),50.1(C-14),44.2(C-13),39.1(C-4),37.4(C-20),36.6(C-10),36.5(C-1),35.4(C-22 ),31.2(C-16),30.9(C-15),28.2(C-12),28.1(C-29),27.8(C-7),26.6(C-28),25.9(C-27),25.1(C-23),24.5(C-2),21.6(C-11),20.3(C-19),19.1(C-21),18.8(C-6),17.8(C-26),15.7(C-18),15.6(C-30)。以上数据与文献[13]基本一致,故化合物2鉴定为大戟醇。

化合物3白色粉末;ESI-MS:m/z392 [M-H2O]+。1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ:0.88(3H,t,J= 6.5 Hz,H-28),1.26(-CH2),3.65(2H,q,J= 6.6 Hz,H-1);13C NMR(100 MHz,CDCl3)δ:63.3(C-1),33.0,32.1,29.9,29.8,29.6,29.5,25.9,22.9(多个亚甲基C信号),14.3(C-28)。以上数据与文献[14]基本一致,故化合物3鉴定为正二十八烷醇。

化合物4无色针晶(正己烷-乙酸乙酯);mp.136~138 ℃。1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ:5.35(1H,d,J= 5.2 Hz,H-6),3.52(1H,m,H-3α),1.00(3H,s,H-19),0.92(3H,d,J= 6.5 Hz,H-21),0.84(3H,t,J= 7.6 Hz,H-29),0.83(3H,d,J= 7.0 Hz,H-26),0.81(3H,d,J= 6.9 Hz,H-27),0.68(3H,s,H-18);13C NMR(100 MHz,CDCl3)δ:140.9(C-5),121.8(C-6),71.9(C-3),56.9(C-14),56.2(C-17),50.2(C-9),45.9(C-24),42.4(C-4),42.4(C-13),39.9(C-12),37.4(C-1),36.6(C-10),36.2(C-20),34.0(C-22),32.0(C-7),32.0(C-8),31.7(C-2),29.3(C-25),28.3(C-16),26.2(C-23),24.4(C-15),23.2(C-28),21.2(C-11),19.9(C-27),19.5(C-19),19.1(C-21),18.9(C-26),12.1(C-29),11.9(C-18)。以上数据与文献[15]基本一致,故化合物4鉴定为β-谷甾醇。

化合物5白色针晶(乙酸乙酯);mp.165~167 ℃。1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ:5.36(1H,br.d,J= 5.0 Hz,H-6),3.55(1H,m,H-3),0.69(3H,s,CH3-18),0.83(3H,s,CH3-19),0.91(3H,d,J= 6.0 Hz,H-21),5.13(1H,dd,J= 8.0,15.1 Hz,H-22),5.01(1H,dd,J= 8.0,15.1 Hz,H-23),0.84(3H,d,J= 6.3 Hz,CH3-26),0.79(3H,d,J= 5.5 Hz,CH3-27),0.81(3H,t,J= 7.4 Hz,CH3-29);13C NMR(100 MHz,CDCl3)δ:141.0(C-5),138.5(C-22),129.6(C-23),121.9(C-6),72.1(C-3),57.1(C-14),50.4(C-9),57.0(C-17),51.5(C-24),42.6(C-13),42.5(C-20),40.6(C-4),40.0(C-12),37.5(C-1),36.8(C-10),32.2(C-7),32.2(C-8),32.0(C-2),31.9(C-25),29.1(C-16),25.6(C-28),24.6(C-15),21.4(C-27),21.2(C-11),20.2(C-21),19.6(C-19),19.2(C-26),12.5(C-29),12.3(C-18)。以上数据与文献[16]报道一致,故鉴定化合物5为豆甾醇。

化合物6白色粉末;ESI-MS:m/z611 [M+H]+。1H NMR(400 MHz,CDCl3)δ:2.76(1H,dd,J= 15.0,9.0 Hz,H-1′),1.67(1H,d,J= 15.0 Hz,H-1′),2.50(1H,m,H-2),5.14(1H,d,J= 8.6 Hz,H-3),5.39(1H,br s,H-5),5.14(1H,br s,H-7),4.52(1H,dd,J= 1.9,10.7 Hz,H-8),1.09(1H,dd,J= 9.0,10.9 Hz,H-9),1.02(1H,dd,J= 9.0,10.9 Hz,H-11),4.81(1H,dd,J= 3.4,10.9 Hz,H-12),2.86(1H,qd,J= 3.8,7.1 Hz,H-13),0.91(3H,d,J= 7.5 Hz,H-16),2.06(3H,dJ= 1.2 Hz,H-7),1.04(3H,s,H-18),0.81(3H,s,H-19),1.04(3H,d,J= 7.1 Hz,H-20),1.96,2.06,2.09(各 3H,s,3 × CH3COO),3.70(2H,br s,H-7′),7.26~7.33(5H,m,H-2′,6′,3′,5′,4′);13C NMR(100 MHz,CDCl3)δ:207.7(C-14),170.5,170.8,170.4(3×CH3CO),170.3(C-8′),139.4(C-6),133.8(C-1′),129.3(C-3′,5′),128.6(C-2′,6′),127.2(C-4′),117.3(C-5),77.0(C-7),76.9(C-3),73.4(C-4),71.6(C-8),71.2(C-15),71.1(C-16),70.7(C-12),43.1(C-13),41.5(C-7′),31.5(C-1),29.8(C-2),29.6(C-11),29.2(C-18),24.7(C-9),20.7,21.0,21.1(3 × CH3CO),19.4(C-10),17.6(C-17),16.2(C-19),13.5(C-20)。以上数据与文献[17]基本一致,故化合物6鉴定为Ingol 7,8,12-triacetate 3-phenylacetate。

化合物7黄色粉末;ESI-MSm/z:455 [M+Na]+,1H NMR(400 MHz,(CD3)2CO)δ:0.90(3H,d,J= 5.8 Hz,H-6″),3.86(1H,m,H-2″),3.69(1H,m,H-3″),3.30(2H,m,H-4″,5″),5.54(1H,d,J= 1.2 Hz,H-1″),6.27(1H,br s,H-6),6.47(1H,br s,H-8),6.91(2H,d,J= 8.4 Hz,H-3′,5′),7.80(2H,d,J= 8.4 Hz,H-2′,6′),12.72(1H,s,5-OH),4.20,3.86(各 1H,br s,7,4′-OH);13C NMR(100 MHz,(CD3)2CO)δ:179.3(C-4),164.9(C-7),163.2(C-5),161.0(C-4′),158.4(C-2),158.0(C-9),135.7(C-3),131.7(C-2′,6′),122.5(C-1′),116.3(C-3′,5′),105.8(C-10),102.6(C-1″),99.5(C-6),94.5(C-8),72.9(C-4″),72.1(C-2″),71.5(C-3″),71.3(C-5″),17.8(C-6″)。以上数据与文献[18]基本一致,故化合物7鉴定为山柰酚-3-O-α-L-吡喃鼠李糖苷。

化合物8白色粉末(氯仿-甲醇);1H NMR(400 MHz,DMSO-d6)δ:5.33(1H,s,H-6),4.42(1H,t,J= 5.8 Hz,H-3),4.22(1H,d,J= 7.8 Hz,H-1′),0.65(3H,s,CH3-18),0.95(3H,s,CH3-19),0.90(3H,d,J= 6.5 Hz,CH3-21),0.83(3H,t,J= 6.2 Hz,H-29),0.81(3H,d,J= 7.0 Hz,H-26),0.79(3H,d,J= 6.9 Hz,H-27);13C NMR(100 MHz,DMSO-d6)δ:141.3(C-5),122.3(C-6),100.8(C-1′),79.0(C-3),56.2(C-14),55.4(C-17),49.6(C-9),45.1(C-24),41.9(C-13),39.3(C-4),38.2(C-12),36.8(C-1),36.2(C-10),35.5(C-20),33.4(C-22),31.5(C-8),31.4(C-7),29.3(C-2),28.7(C-25),27.8(C-16),25.4(C-23),23.9(C-15),22.6(C-28),20.6(C-11),19.8(C-27),19.1(C-26),18.9(C-19),18.6(C-21),11.8(C-29),11.7(C-18),73.5(C-2′),76.9(C-3′),70.1(C-4′),76.8(C-5′),61.1(C-6′)。以上数据与文献[19]基本一致,故化合物8鉴定为胡萝卜苷。

化合物9白色粉末(甲醇);mp.266~267 ℃。1H NMR(400 MHz,DMSO-d6)δ:7.85(1H,s,H-5′),7.66(1H,s,H-5),5.48(1H,d,J= 8.4 Hz,H-1′′),5.17(1H,d,J= 8.4 Hz,2′′-OH),5.08(1H,d,J= 5.3 Hz,4′′-OH),4.58(1H,t,J= 5.3 Hz,3′′-OH),4.10(3H,s,3-OCH3),4.05(3H,s,3′-OCH3),4.01(3H,s,4-OCH3),3.70(1H,m,H-2′′),3.52(1H,m,H-3′′),3.36(2H,m,H-4′′,5′′),3.24(2H,m,H-6′′);13C NMR(100 MHz,DMSO-d6)δ:158.5(C-7′),158.2(C-7),154.4(C-4′),151.9(C-4),141.9(C-2′),141.3(C-3′),141.2(C-2),140.9(C-3),113.7(C-6′),112.9(C-1′),112.7(C-6),112.4(C-1),112.1(C-5),107.6(C-5′),101.3(C-1′′),77.3(C-3′′),76.5(C-5′′),73.3(C-2′′),69.5(C-4′′),61.7(3′-OCH3),61.4(3-OCH3),60.5(C-6′′),56.8(4-OCH3)。以上数据与文献[20]基本一致,故化合物9鉴定为3,4,3′-三甲氧基鞣花酸-4′-O-β-D-吡喃葡萄糖苷。

化合物10黄色粉末;1H NMR(400 MHz,CD3OD)δ:8.06(2H,d,J= 8.9 Hz,H-2′,6′),6.89(2H,d,J= 8.9 Hz,H-1′,5′),6.41(1H,d,J= 2.1 Hz,H-8),6.21(1H,d,J= 2.1 Hz,H-6),5.26(2H,d,J= 7.5 Hz,H-1″),3.69(1H,dd,J= 2.3,11.9 Hz,Hα-6″),3.53(1H,dd,J= 5.4,11.9 Hz,Hβ-6″),3.43(2H,m,H-2″,5″),3.19(2H,m,H-3″,4″);13C NMR(100 MHz,CD3OD)δ:179.5(C-4),166.2(C-7),163.1(C-5),161.6(C-4′),159.1(C-2),158.6(C-9),135.4(C-3),132.3(C-2′,6′),122.8(C-1′),116.1(C-3′,5′),105.7(C-10),104.0(C-1″),99.9(C-6),94.8(C-8),78.5(C-5″),78.1(C-3″),75.7(C-2″),71.4(C-4″),62.6(C-6″)。以上数据与文献[21]基本一致,故化合物10鉴定为山奈酚-3-O-β-D-吡喃葡萄糖苷。

2.2 部分化合物细胞毒和抗炎活性

部分化合物细胞毒性和抗炎活性结果如表1所示,化合物1、2、6、7、9和10在50 μM浓度下对细胞没有明显毒性。化合物9抑制LPS诱导RAW 264.7细胞释放NO的IC50值为 12.0±0.9 μM, 显示出了较强的抑制活性。化合物1、2、7和10的IC50值分别为28.0±1.6、30.8±2.0、38.4±2.1和33.5±1.7 μM,化合物6的IC50值大于50 μM。

表1 部分化合物的细胞毒性和抗炎活性Table 1 Cytotoxicity and anti-inflammatory activity of some compounds

3 结论与讨论

本研究对彩云木的二氯甲烷-甲醇(1∶1)提取物的化学成分及其体外抗炎活性进行了研究,从中分离鉴定了10个化合物,化合物类型主要包括三萜(2个)、Ingol烷型二萜(1个)、黄酮苷类(2个)、甾醇及其苷类(3个)、多酚类(1个)和脂肪醇(1个)。其中化合物3、6~10为首次从该种植物中分离得到,化合物3、6、8和9为首次从聚苞大戟属植物中分离得到。

以脂多糖(LPS)诱导 RAW264.7细胞为体外炎症模型,通过抑制一氧化氮(NO)生成实验评价部分化合物抗炎活性,其中1、2、7和10具有较弱的抗炎活性,多酚类化合物9显示出较好的抗炎活性,有潜力成为治疗炎症性相关疾病的新型药物资源。该研究丰富了彩云木叶的化学成分,解析其抗炎活性物质基础,为其药物研发及利用提供了科学依据。

致谢:感谢埃及国家研究中心植物化学系Mohamed-Elamir F.Hegazy教授提供的植物原料及药材提取工作。

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