龙眼肉调节肠道菌群和BDNF-TrkB通路抗AD的作用机制研究△

2024-03-22 03:51李红艳雷天荣岳德琼赵晨阳张晗李昶杨静娴
中国现代中药 2024年1期
关键词:龙眼肉批号菌群

李红艳,雷天荣,岳德琼,赵晨阳,张晗,李昶,杨静娴

1.辽宁中医药大学,辽宁 大连 116600;

2.河北平安健康集团股份有限公司,河北 石家庄 050000

阿尔茨海默病(Alzheimer's disease,AD)是一种以记忆和认知功能障碍为主要临床表现的神经退行性疾病,目前尚无理想治疗策略。运用中医药多靶点和整体调节优势对AD 进行早期预防与治疗至关重要[1]。龙眼肉是无患子科植物龙眼Dimocarpus longanLour.的假种皮,有补益心脾、养血安神功能[2]。据报道,龙眼肉能提高AD 小鼠的学习记忆能力[3];本课题组前期研究表明,龙眼肉能抑制脾虚痴呆小鼠的病理进程[4]。由于脾虚与肠道菌群失调互为因果[5],笔者推测肠道菌群可能是龙眼肉抗AD 的作用靶点。基于前期基础和文献分析,本研究拟通过AD 小鼠模型联合16S-rDNA 测序探讨龙眼肉抗AD的作用与肠道菌群的相关性,并通过检测脑源性神经营养因子(BDNF)-酪氨酸激酶受体B(TrkB)通路关键蛋白表达,探究龙眼肉抗AD的分子机制。

1 材料

1.1 实验动物

无特定病原体(SPF)级KM 小鼠30 只,体质量18~22 g,雌性,购于辽宁长生生物科技有限公司,实验动物质量认证许可证号:SCXK(辽)2020-0001,合格证证号:210726221101473418,动物实验经辽宁中医药大学实验动物伦理委员会批准(批准文号:21000042021133)。

1.2 样品

龙眼肉购于安徽益生源中药饮片科技有限公司,经辽宁中医药大学王添敏教授鉴定为无患子科植物龙眼Dimocarpus longanLour.的假种皮。

1.3 试药

DNA 抽提试剂盒(批号:12888-100,Qiagen公司);抗淀粉样前体蛋白(APP)抗体(批号:A16265)、抗BDNF抗体(批号:A11028)、抗TrkB抗体(批号:A12325)、抗甘油醛-3-磷酸脱氢酶(GAPDH)抗体(批号:3561122204)、辣根过氧化物酶(HRP)标记山羊抗兔二抗(批号:AS014)均购于ABclonal 公司;抗磷酸化Tau(p-Tau,Ser396)抗体(批号:AF3148)、抗磷酸化TrkB(p-TrkB,Tyr515)抗体(批号:AF3462)均购于Affinity 公司;蛋白裂解液(批号:B0B800150)、二喹啉甲酸(BCA)蛋白定量测定试剂盒(批号:B27A001200)均购于沈阳鼎国生物科技有限公司;电化学发光(ECL)试剂盒(批号:P0018AFT,碧云天生物技术有限公司)。

1.4 仪器

NanoDrop2000 型微量紫外-可见分光光度计、Qubit 型荧光计均购于Thermo Fisher 公司;Miseq 型测序仪、Mi Seq 测序平台均购于Illumina 公司;580BR10905型聚合酶链式反应(PCR)仪(Bio-Rad公司);2500型凝胶成像仪(Tanon公司)。

2 方法

2.1 龙眼肉水提取物的制备

参照本课题组前期方法[4]制备龙眼肉水提取物,取龙眼肉200.00 g,加10倍量双蒸水浸泡1 h后,加热使沸腾,保持沸腾状态继续煎煮1 h,滤过并收集滤液,提取3次,合并滤液,60 ℃减压浓缩至200 mL,冷冻干燥,-20 ℃保存。重复3次实验,计算提取率。

2.2 动物分组及给药

SPF级KM小鼠,随机分为对照组、模型组和龙眼肉组,每组10只。除对照组外,其余各组皮下注射D-半乳糖(140 mg·kg-1)及灌胃AlCl3(20 mg·kg-1),给药体积均为10 mL·kg-1,诱导建立小鼠AD模型[6],每日1次,连续60 d;造模同时,龙眼肉组灌胃给予龙眼肉水提取物2.0 g·kg-1(生药量)[4],给药体积10 mL·kg-1;对照组给予等量0.9%氯化钠溶液。

2.3 Morris水迷宫检测小鼠学习记忆能力

AD 造模55~60 d,进行Morris 水迷宫检测,实验共6 d,前5 d为定位航行实验,每天于4 个象限各训练1 次,每次60 s,以第5 天成绩作为定位航行实验结果;第6 天撤去水下平台,进行空间探索实验,以离平台最远象限作入水点。

2.4 16S-rDNA测序及生物信息学分析

Morris 水迷宫实验结束后,无菌收集各组小鼠粪便,每组收集1.0 g 左右,密封于无菌EP 管中,采用DNA 抽提试剂盒提取样本DNA,琼脂糖凝胶电泳及微量紫外-可见分光光度计检测DNA 纯度和浓度,以基因组DNA为模板,用带barcode 的特异引物进行PCR 扩增。委托上海欧易生物医学科技有限公司,对对照组、AD 模型组及龙眼肉组3 个组别共18 个样本进行16S-rDNA 测序。多样性鉴定区域为v3v4 区,引物序列为343F(5'-TACGGRAGGCAG CAG-3')和798R(5'-AGGGTATCTAATCCT-3')。扩增产物经电泳检测及磁珠纯化后再次PCR扩增,反复2 次,纯化后的PCR 产物进行Qubit 定量,根据PCR产物浓度进行等量混样,并上机测序,根据序列相似性,将相似度≥97%归为一个可操作单元(OTU),使用Qiime 1.8.0软件包挑选出各OTU的代表序列,并将所有代表序列与Silva 数据库进行比对注释,利用欧易生物云平台R包软件进行相关分析及绘图。

2.5 Western blot检测相关蛋白表达

各组取4 只小鼠海马组织,置于RIPA 裂解液中研磨,3000 r·min-1、4 ℃离心10 min(离心半径为14 cm),BCA 试剂盒测定蛋白浓度。等量的蛋白样品用8%十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分离、转膜,加一抗(抗APP、p-Tau、BDNF、TrkB 及p-TrkB 抗体,1∶1000 稀释)4 ℃孵育过夜,酶标二抗(1∶4000 稀释)室温孵育1 h,ECL显色,化学发光成像系统成像,Image J 1.53软件分析条带光密度值。

2.6 数据统计分析

采用GraphPad Prism 8.0.2统计软件进行数据分析,组间比较采用单因素方差分析和t检验,数据采用(±s)表示;16S 高维度数据,组间比较采用R语言相似性分析(Anosim)和多元方差分析(Adonis);P<0.05表示差异具有统计学意义。

3 结果

3.1 龙眼肉水提取物的提取率及成分

龙眼肉水煎液冷冻干燥后称质量,计算提取率为49.27%±3.98%。根据前期研究结果,龙眼肉水提取物含有糖类、氨基酸、核苷酸等多种成分,糖类中以葡萄糖质量分数最高,为246.18 g·kg-1,占龙眼肉水提取物总质量的24.62%;并含有甘露糖等单糖成分、L-脯氨酸等氨基酸成分和尿苷等核苷酸成分[4]。

3.2 龙眼肉提高了AD小鼠学习记忆能力

Morris 水迷宫定位航行实验(图1A~图1C)中小鼠逃避潜伏期(第一次上台时间)和第一次上台前路程,模型组均较对照组延长(P<0.001),龙眼肉组较模型组缩短(P<0.001,P<0.01);各组小鼠第一次上台前平均速度,模型组较对照组慢但差异无统计学意义,龙眼肉组较模型组加快(P<0.05)。空间探索实验(图1D~图1F)中小鼠穿越原平台次数、在原平台总停留时间和平台停留时间百分比,模型组均较对照组减少(P<0.001),龙眼肉组均较模型组增加(P<0.001);另外,上述各检测结果,龙眼肉组与对照组差异均无统计学意义(图1)。结果表明,该造模条件下,模型小鼠出现了典型的学习记忆功能障碍,龙眼肉能提高小鼠学习记忆能力,并使之恢复至正常水平。

图1 龙眼肉对AD小鼠学习记忆能力的影响(±s,n=10)

3.3 龙眼肉改变了AD小鼠菌群多样性

3.3.1 OTUs分类分析 通过OTUs分类对不同来源的微生物群落样本进行分析,绘制花瓣图(图2A),结果可见,除去3组共有OUTs数191,模型组OUTs平均数目1711,较对照组(2139)明显减少(P<0.01);龙眼肉组OUTs 平均数目(1840)较模型组增加,但差异无统计学意义。对各分类层级(界、门、纲、目、科、属、种)上各样本的OTUs 数目和注释结果进行统计,结果表明,各组样本在不同分类水平下注释OTUs的总tags数目不同(图2B)。

图2 龙眼肉对AD小鼠OTUs分类水平的影响(±s,n=6)

3.3.2α多样性和β多样性分析α多样性分析反映生物环境内物种的多样性程度,常用物种累积曲线和等级聚类曲线等表示。由图3A可见,随着样本量增加,物种累积曲线趋于平缓,表明抽样充分;由图3B 可见,等级聚类曲线宽而平坦,说明物种组成丰富且均匀度良好。β多样性反应生境间的多样性程度,使用R软件绘制PCoA分析图,观察个体或群体间的差异,依据Bray Curtis 算法分析物种有无并进行Anosim 分析,结果表明,3 组间物种差异有统计学意义(图3C,P<0.01),进一步基于Euclidean欧氏距离算法比较组间物种丰度差异,采用Adonis进行组间两两比较分析,发现组间物种丰度差异均有统计学意义(图3D~图3F,P<0.01)。

3.3.3 菌群群落结构分析 以属水平为例,对群落结构做进一步分析,制作丰度前15(TOP15)菌群结构柱状图(图4A),选取差异物种丰度TOP10进行方差分析,制作相对丰度柱形图(图4B~图4K)。结果表明,与对照组比较,模型组拟普雷沃菌属、瘤胃球菌科_UCG-014 属、普雷沃氏菌科UCG-001、理研菌科RC9_gut属、瘤胃梭菌属和瘤胃球菌属_1丰度显著升高(P<0.05),马文布赖恩特菌属丰度显著降低(P<0.001);经龙眼肉处理后,上述各种异常升高的菌属丰度均显著降低(P<0.05),但对马文布赖恩特菌属,龙眼肉则无明显影响。另外,鼠杆菌属和毛螺菌科_UCG-001属,模型组与对照组差异无统计学意义,龙眼肉则使两者丰度显著提高(P<0.01)。

图4 龙眼肉对AD小鼠群落结构的影响(±s,n=6)

3.4 龙眼肉影响了小鼠海马组织相关蛋白表达

与对照组相比,模型组APP 和p-Tau 蛋白表达显著提高(P<0.05),龙眼肉2.0 g·kg-1(生药量)能显著降低模型组小鼠海马组织APP 及p-Tau 蛋白表达(P<0.05)。模型组与对照组比较,BDNF、TrkB、p-TrkB蛋白及p-TrkB/TrkB蛋白表达均显著降低(P<0.05),龙眼肉2.0 g·kg-1(生药量)提高了海马组织上述蛋白表达,其中对BDNF、p-TrkB 和p-TrkB/TrkB 蛋白表达影响差异有统计学意义(P<0.05),对TrkB蛋白表达的影响无统计学意义(图5)。

图5 龙眼肉对AD小鼠海马组织相关蛋白表达的影响(±s,n=3)

4 讨论

APP 是一种广泛存在于多种组织的跨膜蛋白,可分解产生β淀粉样蛋白(Aβ)。大脑皮层及海马区出现Aβ沉积和Tau 蛋白过度磷酸化是AD 的典型病理特征。根据记忆力减退、Aβ沉积和Tau 过度磷酸化是AD 的典型特征,本研究首先采用Morris 水迷宫实验和蛋白免疫印迹实验对实验模型进行验证,并分析龙眼肉对类AD 小鼠的治疗作用,结果表明,实验成功建立了类AD 小鼠模型,并且该模型的病理特征可被龙眼肉逆转。进一步,笔者利用16SrDNA 测序技术进行小鼠粪便微生物多样性分析,结果提示龙眼肉可能通过调节菌群平衡干预AD。本研究D-半乳糖/AlCl3诱导的AD 小鼠模型瘤胃球菌科(Ruminococcaceae)_UCG-014 丰度升高与AD 患者菌群变化一致[7];龙眼肉组瘤胃球菌属(Ruminococcus)_1 及毛螺菌科(Lachnospiraceae)_UCG-001 属丰度升高亦与文献APP/PS1 小鼠治疗后肠道微生物变化结果相符[7]。瘤胃球菌科、瘤胃球菌属和毛螺菌科_UCG-001均归属厚壁菌门,厚壁菌门是体内丁酸的主要生产者[8]。本研究结果提示龙眼肉可能是通过影响厚壁菌门,改变其代谢产物短链脂肪酸水平进而产生中枢作用。

BDNF 是在脑内合成的一种神经营养因子,在神经元的存活、分化及生长发育中起着重要作用,影响情感和认知功能[9]。在AD 发生早期,AD 患者就已经检测出脑组织中BDNF 表达下降[10]。TrkB 是BDNF 的特异性受体,BDNF 与TrkB 结合后,引起TrkB 自身磷酸化增加,进而促进神经元生长、生存和分化[11]。肠道菌群与AD等中枢神经退行性疾病相关,与脑-肠轴相互作用、相互影响[12]。据报道,肠道菌群紊乱会减少大脑皮质及海马中的BDNF表达,从而导致中枢神经系统功能失调,引起行为异常和认知障碍乃至AD的发生[13]。基于肠道菌群与脾的异曲同工作用,以及其与BDNF 的密切相关性,本研究在龙眼肉抑制小鼠脾虚痴呆[4]的前期研究基础上,探讨了龙眼肉调节肠道菌群和BDNF-TrkB 通路抗AD 的作用机制。Western blot 实验结果表明,龙眼肉显著提高了BDNF-TrkB 通路关键蛋白BDNF 和p-TrkB 蛋白表达,提高了p-TrkB/TrkB 蛋白表达的比值。综合本研究结果,笔者认为龙眼肉能够明显抑制D-半乳糖/AlC3诱导的类AD 小鼠病理进程,调节肠道菌群、激活BDNF-TrkB 信号通路是龙眼肉抗AD的可能机制。

[利益冲突]本文不存在任何利益冲突。

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