大肠埃希菌外膜蛋白酶T毒力机制的研究进展

2012-01-23 10:40惠长野黄胜和曹虹张艳芳
微生物与感染 2012年4期
关键词:酶原抗菌肽纤溶

惠长野,黄胜和,曹虹,张艳芳

1. 深圳市职业病防治院,深圳 518001; 2. 南方医科大学,广州 510515

Omptins家族蛋白是在肠杆菌科细菌中发现的一类定位于外膜的蛋白酶,包括大肠埃希菌外膜蛋白酶T(outer membrane protease T, OmpT)和OmpP、沙门菌PgtE、鼠疫耶尔森菌Pla和福氏志贺菌SopA[1]。它们的氨基酸序列具有高度同源性(45%~80%),并具有保守的空间构象,由反向平行的β片层包绕而形成中空的桶状结构,锚定在菌体外膜,酶活性中心结构域伸向外膜空间,行使生物学功能[2]。Omptins具有丝氨酸蛋白酶和天冬氨酸蛋白酶特点,脂多糖对酶活性的发挥至关重要[3]。近年来越来越多的研究表明,Omptins与革兰阴性菌毒力相关,但成员之间有较大差异[4]。

编码大肠埃希菌OmpT的基因ompT长久以来被认为是一种管家基因。处于高浓度尿素的细胞裂解液中,OmpT仍保持水解活性,这是引起重组蛋白降解的主要原因[5]。目前,商品化的原核表达宿主菌都是ompT缺陷型。OmpT可能与大肠埃希菌毒力相关,一方面源于Omptins家族Pla及PgtE被证明是耶尔森菌和沙门菌重要的毒力因子;另一方面主要来源于大量的流行病学分析数据,如不同国家和地区学者收集到的尿路致病性大肠埃希菌(uropathogenicEscherichiacoli, UPEC)中OmpT都有很高的检出率,认为其可能是泌尿道感染的细菌毒力因子[6-8]。有研究表明,OmpT在大肠埃希菌脑膜炎分离株中的分布高达96%,显著高于其他典型脑膜炎致病毒力因子[9]。皮肤和软组织感染相关的102株大肠埃希菌分离株中,80%携带有OmpT,而其他毒力因子检出率最高的CNF1仅为32%[10]。

大肠埃希菌OmpT作为多功能蛋白,以多机制参与细菌感染侵袭过程。目前,对其致病机制的研究主要集中在以下几个方面:①通过发挥蛋白酶活性,参与毒力因子前体加工;②降解宿主细胞分泌的抗菌肽,有利于细菌在体内存活;③通过激活纤溶酶原降解细胞外基质,从而促进侵袭;④OmpT本身作为细菌黏附因子介导黏附侵袭过程;⑤可能与一些毒力基因的表达调控相关。

1 尿路感染与UPEC

尿路感染是继呼吸道感染的机体第二大易感染疾病,病原体以UPEC为主[11]。尿路感染多发于机体免疫力低下者,以及膀胱、肾远球小管等部位生理或功能紊乱的人群[7]。健康人中尿路感染并不常见,这与人体完善的防御机制有关。无菌尿液的冲刷不断清除少量入侵细菌,避免上行感染发生,同时天然免疫构成了机体的主要防线。尿路上皮细胞可分泌多种蛋白以抵御微生物入侵,已知的有Tamm-Horsfall、乳铁蛋白(lactoferrin)和脂钙蛋白(lipocalin),这些黏蛋白覆盖于上皮细胞表面,不利于致病菌黏附。组成型和诱导型抗菌肽,如α防御素(α-defensin)、β防御素、抗菌肽(cathelicidin)等的分泌,可直接杀伤侵入的病原菌[12,13]。尿路上皮同时存在2类分子:一类是受体分子(细胞表面结构、单纯蛋白、糖蛋白等),可识别并结合特异性的致病菌黏附相关因子;另一类是效应分子,包括抗菌肽类和一些可快速中和入侵病菌的蛋白,化学因子及细胞因子的分泌可诱导吞噬细胞向感染部位聚集,激活后吞噬能力大大提高[14]。

尿路感染好发于女性,与其尿路解剖生理有关,女性尿道短,尿道口在会阴部和肛门附近。UPEC易沿尿道上行,借助1型菌毛等黏附因子定植于膀胱。如何突破天然免疫防御并成功侵袭膀胱上皮细胞是实现感染的关键[15]。FimH、CNF1、SurA、OmpA等已通过细胞模型和动物模型证实与UPEC黏附侵袭毒力相关[11,16]。OmpT、KpsMT等在粪大肠菌群中也有较高分布,但在UPEC中有更高的检出率,是否与UPEC毒力有关还有待相关研究证实[6,7,9]。

2 OmpT的底物与切割位点

OmpT是引起外源重组蛋白降解的最重要蛋白水解酶,可从已鉴定的OmpT底物来推测其在体内的生理功能[17]。表1列出已证实的OmpT底物肽或蛋白的作用位点,可看出OmpT主要识别并水解由碱性氨基酸Arg和Lys残基组成的肽键,而旁侧氨基酸序列特征性不强[17]。携带有α溶血素(α-hemolysin, HlyA)信号肽的融合蛋白,分泌过程中通过大肠埃希菌外膜时被OmpT剪切去除信号肽[18]。OmpT参与霍乱弧菌毒素蛋白前体的翻译后加工[19]。从已有的研究报道推测,OmpT可能与某些毒力因子前体分泌过程的剪切加工有关。

表1 已鉴定的OmpT底物及识别序列Tab.1 Substrates and cleavage sites of OmpT

近年来研究表明,水解阳离子抗菌肽和抵抗宿主天然免疫防御体系可能是OmpT的主要生理功能之一[20, 21]。鱼精蛋白主成分salmine AI富含连续精氨酸,ompT+株表现出对其明显的抗性,salmine AI已作为OmpT体外活性测定的最适底物[3]。在机体正常情况下,天然免疫重要效应分子抗菌肽始终维持较低水平表达。当致病菌入侵时,抗菌肽被迅速诱导至一个高水平表达,进而发挥抗感染作用[13]。在感染初期,通常在几分钟至几小时,天然免疫激活,在入侵病原菌复苏及繁殖之前,就将其完全清除,且不引起明显的炎症反应[7]。相比之下,适应性免疫(高度专一的抗体、T细胞受体依赖的淋巴细胞等)在彻底消灭病原体及防止再感染方面有重要意义[13]。

防御素在病原体入侵时可迅速诱导表达,OmpT被证实与UPEC抵抗这类抗菌肽密切相关,有利于细菌在尿路中存活而引发感染[20]。对防御素这类广泛分布于动植物界的阳离子抗菌肽序列进行分析,富含碱性氨基酸及半胱氨酸是防御素的共性。表2列举了已鉴定的人源防御素序列,这些连续碱性氨基酸残基形成的肽键作为OmpT水解灭活的位点还有待证实。但最新研究成果很好地支持了这一假说,肠出血性及肠致病性大肠埃希菌OmpT被证实与LL-37抗性有关,质谱表明OmpT正是作用于LL-37的2个假定水解位点(图1A)[22]。底物抗菌肽二级结构和假定水解位点如图1所示(PyMol软件作图)。此外,Omptins家族成员OmpP和PgtE也被证实与抗菌肽抵抗有关[23,24]。

ZF-RNase-3是来源于斑马鱼的RNA酶,同时具有杀菌活性。 进一步的研究发现,ZF-RNase-3

A: LL-37 (PDB ID: 2K6O),LLGDFFRKSKEKIGKEFKRIVQRIKDFLRNLVPRTES;B: β-defensin-2 (PDB ID: 1E4Q),PVTCLKSGAICHPVFCPRRYKQIGTCGLPGTKCCKKP;C: α-defensin-1 (PDB ID: 3LO4),ACYCRIPACIAGERRYGTCIYQGRLWAFCC.

表2 已鉴定的人源防御素氨基酸序列Tab.2 Amino acid sequences of human defensins

需利用病原体蛋白酶的加工才能生成具有抗菌活性的肽段,OmpT被证实是这一环节的关键酶[25]。这可能是病原体与宿主协同进化的结果。OmpT不仅作用于宿主抗菌肽,还可作用于细菌素。ColE2是大肠埃希菌分泌的、具有杀菌活性的内切酶,ColE2与免疫蛋白Im2由细菌以聚合体的形式分泌,有效降低了ColE2对产生菌自身的杀灭活性,更重要的是防止OmpT对ColE2的水解灭活[26]。

3 OmpT与细菌毒力

3.1 OmpT激活纤溶酶原活性

纤溶酶在体内具有抗凝及降解细胞外基质的活性,许多致病菌都产生并利用纤溶酶原激活剂作用于凝血系统,一些致病株利用表面受体结合纤溶酶(原)并使酶激活免受生理抑制,有利于其突破正常组织屏障[27]。大肠埃希菌外膜组分被证实具有激活纤溶酶原的活性,OmpT与耶尔森菌的纤溶酶原激活剂Pla同源性达47%[28]。McCarter 等[17]利用噬菌体展示肽库研究OmpT的底物专一性,确定OmpT识别位点上下游6个氨基酸的分布概率,其中包括天然纤溶酶原激活位点。纯化的OmpT蛋白最终被证实是纤溶酶原的弱激活剂[29]。

凝血系统的激活是机体抗感染机制之一,纤维蛋白沉积可有效阻止病原体侵袭扩散,激活纤溶酶原是病原体的抵抗策略之一[27]。来源于人体的内源性抗凝剂——组织因子途径抑制剂(tissue factor pathway inhibitor,TFPI)被证实是Omptins的理想底物,Pla、OmpT和PgtE对其水解灭活的速率甚至高于对纤溶酶原的激活[30]。这可能是人体TFPI在长期进化过程中产生对抗病原体抗凝的机制,也是严重感染引发败血症患者出现血管内弥散性凝血的原因之一。

3.2 OmpT提高细菌黏附活性

ompT敲除可导致新生儿脑膜炎大肠埃希菌分离株RS218在体外黏附脑微血管内皮细胞的能力下降20%[31]。UPEC临床分离株CFT073缺失ompT,重要的菌毛黏附因子FimH等毒力因子表达不受影响,但体外黏附人膀胱上皮细胞及体内定植小鼠膀胱的能力显著降低[32]。ompT敲除株回补ompT表达质粒及ompT点突变致酶活性丧失质粒,菌株黏附能力均得到恢复,提示OmpT对菌株黏附能力的影响不是通过酶活性介导的[33]。OmpT具有蛋白水解活性,不同于一般的细菌黏附因子,上皮细胞中OmpT相互作用蛋白的分离和鉴定有利于OmpT介导细菌黏附详细机制的阐明。

菌毛黏附因子介导微生物黏附侵袭在致病性大肠埃希菌中较常见。在致新生儿脑膜炎大肠埃希菌分离株中可被唾液酸半乳糖苷识别的S型菌毛很普遍,但其在脑膜炎发病中的作用还未充分阐明[31]。Parkkinen等[34]研究表明,SfaA可捕获纤溶酶原并促进酶原激活,降解细胞外基质,促进细菌穿越基底膜。OmpT及SfaA在纤溶酶原激活过程中是否存在协同作用,有待进一步研究。

3.3 OmpT的表达调控

ToxR是霍乱弧菌的一种跨膜DNA结合蛋白,它至少参与了17个毒力基因的表达调控。ompT是已知唯一被其下调的毒力基因。关于OmpT在致病过程中的表达调控,知之甚少。Li等研究表明,ToxR直接结合到ompT启动子A/T富集区,在转录水平抑制OmpT表达,cAMP受体蛋白可激活OmpT表达[35]。在216株UPEC中,ompT与kpsMT、cnf1、sfa、prf这些毒力基因遗传学上并非紧密连锁,推测在功能及调控上相关[8]。不同来源的ompT+株对同种抗菌肽的抵抗能力并不相同,各分离株中ompT转录水平存在较大差异。相当一部分ompT+株中OmpT一般情况下并不表达[5,20]。最新研究指出,抗菌肽接触病原体后,与抗性相关的基因表达可迅速上调[22]。针对不同感染组织内环境的差异,细菌在与宿主长期斗争中进化了一套精密的表达调控机制。

4 结语

OmpT是一种毒力相关因子,与大肠埃希菌尿路感染相关。作为一种多功能蛋白,抵抗宿主阳离子抗菌肽、激活纤溶酶原是其重要的生理功能。此外,OmpT是否以黏附因子的身份介导细菌侵袭还有待进一步研究。随着细菌对抗生素的耐药日趋严重,人们对抗菌肽寄予厚望,而对OmpT这类蛋白酶毒力机制的深入研究有利于新型耐酶抗菌肽的设计,也为探寻新的抗感染途径、筛选新药作用靶点提供了可能。

[1] Kukkonen M, Korhonen TK. The omptin family of enterobacterial surface proteases/adhesins: from housekeeping in Escherichia coli to systemic spread of Yersinia pestis [J]. Int J Med Microbiol, 2004, 294(1): 7-14.

[2] Vandeputte-Rutten L, Kramer RA, Kroon J, Dekker N, Egmond MR, Gros P. Crystal structure of the outer membrane protease OmpT from Escherichia coli suggests a novel catalytic site [J]. EMBO J, 2001, 20(18): 5033-5039.

[3] 刘晓露, 惠长野, 赵铁, 彭亮, 张文炳, 黄胜和, 曹虹. 大肠杆菌外膜蛋白酶T 及其突变体的表达、复性及生物活性分析 [J]. 微生物学通报, 2011, 38(9): 1393-1399.

[4] Haiko J, Suomalainen M, Ojala T, Lähteenmäki K, Korhonen TK. Invited review: Breaking barriers—attack on innate immune defences by omptin surface proteases of enterobacterial pathogens [J]. Innate Immun, 2009, 15(2): 67-80.

[5] Stumpe S, Schmid R, Stephens DL, Georgiou G, Bakker EP. Identification of OmpT as the protease that hydrolyzes the antimicrobial peptide protamine before it enters growing cells of Escherichia coli [J]. J Bacteriol, 1998, 180(15): 4002-4006.

[6] Yamamoto S. Molecular epidemiology of uropathogenic Escherichia coli [J]. J Infect Chemother, 2007, 13(2): 68-73.

[7] Bower JM, Eto DS, Mulvey MA. Covert operations of uropathogenic Escherichia coli within the urinary tract [J]. Traffic, 2005, 6(1): 18-31.

[8] Foxman B, Zhang L, Palin K, Tallman P, Marrs CF. Bacterial virulence characteristics of Escherichia coli isolates from first-time urinary tract infection [J]. J Infect Dis, 1995, 171(6): 1514-1521.

[9] Johnson JR, Oswald E, O’Bryan TT, Kuskowski MA, Spanjaard L. Phylogenetic distribution of virulence-associated genes among Escherichia coli isolates associated with neonatal bacterial meningitis in the Netherlands [J]. J Infect Dis, 2002, 185(6): 774-784.

[10] Petkovsek Z, Elersic K, Gubina M, Zgur-Bertok D, Starcic Erjavec M. Virulence potential of Escherichia coli isolates from skin and soft tissue infections [J]. J Clin Microbiol, 2009, 47(6): 1811-1817.

[11] Abraham S, Chapman TA, Zhang R, Chin J, Mabbett AN, Totsika M, Schembri MA. Molecular characterization of Escherichia coli strains that cause symptomatic and asymptomatic urinary tract infections [J]. J Clin Microbiol, 2012, 50(3): 1027-1030.

[12] Schutte BC, Mitros JP, Bartlett JA, Walters JD, Jia HP, Welsh MJ, Casavant TL, McCray PB Jr. Discovery of five conserved beta-defensin gene clusters using a computational search strategy [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2002, 99 (4):2129-2133.

[13] Zasloff M. Antimicrobial peptides, innate immunity, and the normally sterile urinary tract [J]. J Am Soc Nephrol, 2007, 18(11): 2810-2816.

[14] Hannan TJ, Totsika M, Mansfield KJ, Moore KH, Schembri MA, Hultgren SJ. Host-pathogen checkpoints and population bottlenecks in persistent and intracellular uropathogenic Escherichia coli bladder infection [J]. FEMS Microbiol Rev, 2012, 36(3): 616-648.

[15] Dhakal BK, Kulesus RR, Mulvey MA. Mechanisms and consequences of bladder cell invasion by uropathogenic Escherichia coli [J]. Eur J Clin Invest, 2008, 38(Suppl 2): 2-11.

[16] Nicholson TF, Watts KM, Hunstad DA. OmpA of uropathogenic Escherichia coli promotes postinvasion pathogenesis of cystitis [J]. Infect Immun, 2009, 77(12): 5245-5251.

[17] McCarter JD, Stephens D, Shoemaker K, Rosenberg S, Kirsch JF, Georgiou G. Substrate specificity of the Escherichia coli outer membrane protease OmpT [J]. J Bacteriol, 2004, 186(17): 5919-5925.

[18] Hanke C, Hess J, Schumacher G, Goebel W. Processing by OmpT of fusion proteins carrying the HlyA transport signal during secretion by the Escherichia coli hemolysin transport system [J]. Mol Gen Genet, 1992, 233(1-2): 42-48.

[19] Klauser T, Pohlner J, Meyer TF. Selective extracellular release of cholera toxin B subunit by Escherichia coli: dissection of Neisseria Iga beta-mediated outer membrane transport [J]. EMBO J, 1992, 11(6): 2327-2335.

[20] Hui CY, Guo Y, He QS, Peng L, Wu SC, Cao H, Huang SH. Escherichia coli outer membrane protease OmpT confers resistance to urinary cationic peptides [J]. Microbiol Immunol, 2010, 54(8): 452-459.

[21] Koprivnjak T, Peschel A. Bacterial resistance mechanisms against host defense peptides [J]. Cell Mol Life Sci, 2011, 68(13): 2243-2254.

[22] Thomassin JL, Brannon JR, Gibbs BF, Gruenheid S, Le Moual H. OmpT outer membrane proteases of enterohemorrhagic and enteropathogenic Escherichia coli contribute differently to the degradation of human LL-37 [J]. Infect Immun, 2012, 80(2): 483-492.

[23] Hwang BY, Varadarajan N, Li H, Rodriguez S, Iverson BL, Georgiou G. Substrate specificity of the Escherichia coli outer membrane protease OmpP [J]. J Bacteriol, 2007, 189(2): 522-530.

[24] Guina T, Yi EC, Wang H, Hackett M, Miller SI. A PhoP-regulated outer membrane protease of Salmonella enterica serovar typhimurium promotes resistance to alpha-helical antimicrobial peptides [J]. J Bacteriol, 2000, 182(14): 4077-4086.

[25] Zanfardino A, Pizzo E, Di Maro A, Varcamonti M, D’Alessio G. The bactericidal action on Escherichia coli of ZF-RNase-3 is triggered by the suicidal action of the bacterium OmpT protease [J]. FEBS J, 2010, 277(8): 1921-1928.

[26] Duché D, Issouf M, Lloubès R. Immunity protein protects colicin E2 from OmpT protease [J]. J Biochem, 2009, 145(1): 95-101.

[27] Lahteenmaki K, Edelman S, Korhonen TK. Bacterial metastasis: the host plasminogen system in bacterial invasion [J]. Trends Microbiol, 2005, 13(2): 79-85.

[28] Leytus SP, Bowles LK, Konisky J, Mangel WF. Activation of plasminogen to plasmin by a protease associated with the outer membrane of Escherichia coli [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1981, 78(3): 1485-1489.

[29] 惠长野, 郭妍, 吴书驰, 彭亮, 曹虹, 黄胜和. 大肠杆菌K1致病株外膜蛋白T体外功能 [J]. 微生物学报, 2010, 50(1): 48-53.

[30] Yun TH, Cott JE, Tapping RI, Slauch JM, Morrissey JH. Proteolytic inactivation of tissue factor pathway inhibitor by bacterial omptins [J]. Blood, 2009, 113(5): 1139-1148.

[31] Xie Y, Parthasarathy G, Di Cello F, Teng CH, Paul-Satyaseela M, Kim KS. Transcriptome of Escherichia coli K1 bound to human brain microvascular endothelial cells [J]. Biochem Biophys Res Commun, 2008, 365(1): 201-206.

[32] 赵铁, 方幸幸, 刘晓露, 彭亮, 龙敏, 张文炳, 罗军, 曹虹. 尿路致病性大肠埃希菌外膜蛋白T敲除株的构建及功能评价 [J]. 南方医科大学学报, 2012, 32(7): 956-959.

[33] 惠长野, 刘晓露, 彭亮, 易娟, 刘征宇, 高朝贤, 王佃鹏. 脑膜炎大肠杆菌OmpT与菌体黏附脑微血管内皮细胞相关 [C]. 中华医学会第七次全国中青年检验医学学术大会论文集. 南京:2012.

[34] Parkkinen J, Hacker J, Korhonen TK. Enhancement of tissue plasminogen activator-catalyzed plasminogen activation by Escherichia coli S fimbriae associated with neonatal septicaemia and meningitis [J]. Thromb Haemost, 1991, 65(5): 483-486.

[35] Li CC, Crawford JA, DiRita VJ, Kaper JB. Molecular cloning and transcriptional regulation of ompT, a ToxR-repressed gene in Vibrio cholerae [J]. Mol Microbiol, 2000, 35(1): 189-203.

猜你喜欢
酶原抗菌肽纤溶
过敏性紫癜儿童凝血纤溶系统异常与早期肾损伤的相关性
纤维蛋白原联合D二聚体检测对老年前列腺增生术后出血患者纤维蛋白溶解亢进的应用价值
抗菌肽的生物学特性及在畜禽养殖中的应用
人微小纤溶酶原cDNA在毕赤酵母中的高效表达及活性检测
新型抗菌肽菌丝霉素纯化工艺研究
抗菌肽修饰方法与抗菌机制的研究进展
重组组织型纤溶酶原激活剂静脉溶栓治疗急性脑梗死的疗效及安全性
替罗非班与纤溶酶原激活剂治疗PCI合并慢血流急性STEMI的临床疗效
尤瑞克林与组织型纤维蛋白酶原激活剂治疗急性脑梗死的疗效评价
重型颅脑损伤患者凝血纤溶系统标志物在脑动静脉中的变化