阿胶对气道炎症小鼠Th17/Treg亚群失衡的逆转作用

2018-03-16 03:34张喆马云胡晶红兰红云张永清姚成芳
山东医药 2018年6期
关键词:阿胶亚群细胞因子

张喆,马云,胡晶红,兰红云,张永清,姚成芳

(1山东中医药大学,济南 250355;2山东省医学科学院基础医学研究所)

大气污染、香烟烟雾等有害颗粒或气体会诱发肺气肿、哮喘、慢性阻塞性肺疾病(COPD)等多种呼吸道慢性疾病[1]。Th17细胞/Treg细胞免疫平衡在慢性气道炎症性疾病中扮演着重要角色[2,3]。本草古籍和现代药典中均有阿胶治疗“虚劳嗽咳,肺痿吐脓”等慢性呼吸道炎症以及“补肺气,止嗽止痢”的记载,但其作用机制尚不明确。本研究采用香烟暴露法建立气道炎症小鼠模型,在此基础上使用阿胶灌胃,并观察小鼠肺组织形态、支气管肺泡灌洗液(BALF)的炎症细胞和Th17细胞、Treg细胞亚群比例及IL-6、IL-17A、Foxp3因子表达,探讨阿胶对气道炎症小鼠肺组织Th17/Treg亚群的影响在治疗气道炎症方面发挥的作用。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 实验动物 SPF级雄性C57BL/6小鼠24只,体质量18~22 g,6~8周龄,购自济南朋悦实验动物繁育有限公司,26 ℃、12 h交替光照饲养,自由进水进食。

1.1.2 主要试剂及仪器 抗小鼠荧光抗体PE-CD3、percp-cy5.5-CD8、percp-CD4、APC-cy7-IL-17A、APC-INF-γ、PE-IL-5、PE-cy5.5-CD25、PE-Foxp-3均购自eBioscience公司;人外周血淋巴细胞分离液购自TBD sciences公司;TRIzol Reagent、2×Es Taq Master-Mix、dNTP、RNase、5×Buffer购自北京康为世纪生物科技有限公司;M-MLV购自Invitrogen公司,RNA酶抑制剂购于BioBasic公司,二乙基焦碳酸酯(DEPC)、琼脂糖购于AMRESCO公司;丙酮、氯仿、异丙醇、无水乙醇购于天津广成化学试剂有限公司;内参照GAPDH、IL-17A、IL-6、Foxp-3引物由上海博尚生物技术有限公司合成;RIPA裂解液购自Beyotime公司;ELISA IL-17A、ELISA IL-6和ELISA Foxp-3试剂盒均购于联科生物技术有限公司。梯度PCR扩增仪(TGradient,Biometra,德国);凝胶成像系统(Alplha ImagerTM2200,美国);电泳仪(Thermo,美国);酶标仪(Thermo,美国);FACSCalibur流式细胞仪(Becton Dickinson公司)。

1.2 气道炎症动物模型的建立与处理 24只小鼠按随机数字法平均分成正常组、模型组和阿胶组。模型组和阿胶组每日两次香烟烟熏,烟熏量10支/次(5支一组,点燃插入40 cm×30 cm×20 cm自制烟熏箱静置15 min,待燃尽后按相同方法点燃第二组5支香烟),每次烟熏时间共30 min,共24周。模型组小鼠每日0.2 mL PBS灌胃,阿胶组每日给予0.2 mL阿胶溶液(0.2 g/mL)灌胃,共24周。正常组常规饲养。

1.3 观察指标

1.3.1 一般情况 观察各组小鼠精神、体质量一般情况。

1.3.2 血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平 小鼠摘眼球后取约1.5 mL外周血离心分离上清,使用ELISA Kit试剂盒检测血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平。

1.3.3 BALF细胞分类计数 取血后脱颈椎处死,解剖分离气管周围的组织;气管作一横行切口,插入气管插管,结扎右主支气管;经气管插管以10 mL生理盐水分3次灌洗左肺后,回收的BALF作细胞分类计数。

1.3.4 肺组织病理 取右肺上叶置于4%甲醛溶液中,按照常规方法制作石蜡切片,切片使用HE染色来评价其病理改变,具体标准主要参考文献[4]中的方法来确定。

1.3.5 肺组织Th17细胞、Treg细胞比例 右肺中叶经过消化、研磨、破红、过滤等操作制备单核细胞悬液。调整单个核细胞浓度(1×106/管)后离心,沉淀用1.5 mL刺激液重悬,转移至24孔板中,于CO2细胞培养箱37 ℃培养6 h。经过滤转移至EP管中,1×PBS洗2次,离心后弃上清,沉淀加入小鼠血清重悬后室温避光封闭15 min。按说明书参考抗体浓度加入外标抗体(PE-CD3、percp-CD4、percp-cy5.5-CD8、PE-cy5.5-CD25),4 ℃避光孵育30 min。1×PBS洗2次,加入穿膜固定液500 μL,4 ℃固定30 min,固定后细胞用穿膜液洗2次后加入500 μL穿膜液4 ℃避光孵育30 min。按说明书加入内标抗体(APC-cy7-IL-17A、PE-Foxp-3),4 ℃避光孵育1 h后用800 μL 1%多聚甲醛4 ℃避光12 h。PBS重悬细胞,转管,上机检测,采用Flowjo7.6分析Th17亚群(CD4+IL-17A+)及Treg亚群(CD4+CD25+Foxp3+)比例。

1.3.6 肺组织IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表达 将右肺第三小叶置于经DEPC处理的EP管中,采用TRIzol Reagent提取样本总mRNA,采用oligo dT为RT反应引物。PCR反应条件:RNase free water 6.5 μL,Taq酶12.5 μL,RT反应产物4 μL,上、下游特异性引物各1 μL,总体积20 μL。PCR循环参数:预变性95 ℃,5 min;94 ℃,1 min;58 ℃,1 min;72 ℃,1 min,30个循环,末次循环后72 ℃延长10 min。PCR产物经1.2%凝胶电泳,结果采用Alpha凝胶成像系统分析图像,以GAPDH为内参照,以目的基因与同步GAPDH灰度值比值作为相对表达量。

2 结果

2.1 各组小鼠一般情况 模型组小鼠体质量增长缓慢,出现被毛枯黄、脱落、易激惹等表现;阿胶组被毛枯黄、脱落、易激惹现象较模型组相对减轻,体质量正常增长。第24周末,正常组、模型组和阿胶组体质量分别为(26.51±1.89)、(24.32±1.90)、(26.38±1.96)g,模型组与正常组相比,阿胶组与模型组相比,P均<0.05。

2.2 各组小鼠BALF细胞分类计数比较 见表1。

表1 各组小鼠BALF细胞分类计数比较

注:与正常组相比,*P<0.05;与模型组相比,#P<0.05。

2.3 各组小鼠肺组织病理结果比较 正常组小鼠肺组织结构正常。模型组小鼠肺间质有大量炎性细胞浸润,肺泡破裂融合,肺泡数量减少、直径变大,形成肺气肿,出现毛细血管扩张和红细胞渗出,肺间质明显增厚。阿胶组小鼠肺组织炎性细胞浸润程度明显降低,肺间质增厚不明显,无红细胞渗出,肺脏炎症情况明显改善,切片与正常组基本一致。

2.4 各组小鼠肺组织Th17细胞、Treg细胞比例比较 见表2。

表2 各组小鼠肺组织Th17细胞、Treg细胞比例比较

注:与正常组相比,*P<0.05;与模型组相比,#P<0.05。

2.5 各组小鼠血清IL-17A、Foxp3、IL-6水平比较 见表3。

表3 各组小鼠血清IL-17A、Foxp3、IL-6水平比较

注:与正常组相比,*P<0.05;与模型组相比,#P<0.05。

2.6 各组小鼠肺组织IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表达比较 见表4。

表4 各组小鼠肺组织IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表达比较

注:与正常组相比,*P<0.05;与模型组相比,#P<0.05。

3 讨论

大气细颗粒物(PM2.5)污染、吸烟与被动吸烟均是人类COPD发生的主要危险因素。吸入有害颗粒或气体可导致肺部炎症,炎症反应中被激活的炎症细胞释放多种介质,这些介质能破坏肺的结构和(或)促进中性粒细胞炎症反应,PM2.5还可以加重原有气道炎症的发展[5]。T淋巴细胞亚群及细胞因子表达失衡与COPD发病的相关性已被国内外诸多研究[4,6]证实,其中Th17细胞/Treg细胞免疫平衡在COPD的免疫学发病机制中扮演着重要角色[7]。烟雾等有害颗粒或气体刺激可引起气道上皮细胞的损伤,激活抗原呈递细胞分泌大量IL-1β、IL-6等炎性细胞因子,促使CD4+T细胞向Th17细胞分化增殖介导自身免疫反应。同时,Th17细胞分泌IL-17、IL-21、IL-22等促炎细胞因子,募集中性粒细胞和巨噬细胞浸润至炎症组织,释放弹性蛋白酶、基质金属蛋白酶(MMPs)破坏肺组织。肺组织损伤和基质损伤后释放的弹性蛋白片段同样可作为自身抗原,刺激更多炎性介质释放,形成“瀑布效应”[8]。鼠类实验和人类研究都表明,Th17细胞因子在COPD小鼠肺组织中的表达显著上调[9],在肺气肿小鼠肺脏的表达也显著增加[10,11]。IL-6是Th17细胞刺激上皮细胞和成纤维细胞间接分泌的主要的致炎性因子,同时也是促进Th17细胞分化的调控因子[12]。IL-6的增加不仅募集中性粒细胞到炎症部位加剧炎症反应,同时诱导初始T细胞向Th17细胞分化,进一步加重Th17介导的炎症反应。调节性T细胞(CD4+CD25+Treg)通过其免疫抑制能力在维持免疫稳态和耐受中发挥重要作用。机体发生炎症反应时,会通过上调Treg亚群抑制机体过强的免疫反应来保护宿主,避免因过强的免疫反应造成严重病理损害,其在炎症中表达的差异可以间接反映炎症的严重程度[13,14]。

目前,西医治疗非感染性炎症主要依赖激素调节,但长期使用激素会导致机体免疫功能受到抑制,抗病原微生物及肿瘤监视功能降低。本草古籍和现代药典中均有阿胶治疗“咳嗽”的记载,如《本草备要》中有阿胶治疗“虚劳嗽咳,肺痿吐脓”的记载,《本草纲目》中有阿胶治疗“肺风喘促,多年咳嗽”的记载,《本草约言》中有阿胶“补肺气,止嗽止痢,治痿等剂皆用之,惟久而虚者宜之”的记载,但现代医学对于阿胶治疗气道炎症的机制研究还处于起步阶段。以往研究[15]发现,阿胶的抗炎机制可能与改善组织血管通透性,降低炎性渗出,提高机体抗氧化能力,减少过氧化物积累,减轻氧化应激反应的作用有关。赵福东等[16]研究结果显示,阿胶可以通过降低哮喘模型动物外周血IL-4因子表达水平逆转Th2细胞优势状态,从而减轻气道嗜酸性粒细胞浸润,但从干预Th17细胞/Treg细胞亚群失衡角度治疗呼吸系统炎症的作用机制未见文献报道。本研究采用香烟烟雾暴露法复制气道炎症小鼠模型,探讨烟尘暴露下肺脏局部Th17细胞及细胞因子的变化以及阿胶的逆转作用。结果显示,与正常组相比,模型组小鼠肺组织Th17细胞、Treg细胞比例高,血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平和肺组织IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表达高,肺间质有大量炎性细胞浸润,肺泡破裂融合;与模型组相比,阿胶组小鼠肺组织Th17细胞、Treg细胞比例低,血清IL-17A、IL-6、Foxp3水平和肺组织IL-17A、Foxp3、IL-6 mRNA表达低,肺脏炎症情况明显改善。

综上可见,香烟暴露导致的气道炎症小鼠肺组织Th17细胞、Treg细胞比例高,阿胶可能是通过减少炎症部位升高的Th17细胞、Treg细胞比例,逆转Th17/Treg亚群失衡状态抑制气道炎症而发挥治疗作用。

[1] Hogg JC, Timens W. The pathology of chronic obstructive pulmonary disease[J]. Annu Rev Pathol, 2009,4:435-459.

[2] Shan M, Yuan X, Song LZ, et al. Cigarette smoke induction of osteopontin(SPP1)mediates T(H)17 inflammation in human and experimental emphysema[J]. Sci Transl Med, 2012,4(117):117ra119.

[3] Zhou HB, Hua W, Jin Y, et al. Tc17 cells are associated with cigarette smoke-induced lung inflammation and emphysema[J].Respirology, 2015,20(3):426-433.

[4] 王云锋,娄云,李国君,等.大气细颗粒物的毒性效应及其机制研究进展[J].毒理学杂志,2016,30(1):69-72.

[5] Lee J, Taneja V, Vassallo R. Cigarette smoking and inflammation:cellular and molecular mechanisms[J]. J Dent Res, 2012,91(2):142-149.

[6] Perricone C, Versini M, Ben-Ami D, et al. Smoke and autoimmunity: The fire behind the disease[J]. Autoimmun Rev, 2016,15(4):354-374.

[7] Montalbano AM, Riccobono L, Siena L, et al. Cigarette smoke affects IL-17A,IL-17F and IL-17 receptor expression in the lung tissue:Ex vivo and in vitro studies[J]. Cytokine, 2015,76(2):391-402.

[8] Barcelo B, Pons J, Ferrer JM, et al. Phenotypic characterisation of T-lymphocytes in COPD:abnormal CD4+CD25+regulatory T-lymphocyte response to tobacco smoking[J]. Eur Respir J, 2008,31(3):555-562.

[9] Harrison OJ, Foley J, Bolognese BJ, et al. Airway infiltration of CD4+CCR6+Th17 type cells associated with chronic cigarette smoke induced airspace enlargement[J]. Immunol Lett, 2008,121(1):13-21.

[10] Shan M, Yuan X, Song LZ, et al.Cigarette smoke induction of osteopontin(SPP1)mediates T(H)17 inflammation in human and experimental emphysema[J]. Sci Transl Med, 2012,4(117):117ra119.

[11] Zhou HB, Hua W, Jin Y, et al. Tc17 cells are associated with cigarette smoke-induced lung inflammation and emphysema[J].Respirology, 2015,20(3):426-433.

[12] Littman DR, Rudensky AY. Th17 and regulatory T cells in mediatingand restraining inflammation[J]. Cell, 2010,140(6):845-858.

[13] Roos-Engstrand E, Ekstrand-Hammarstrom B, Pourazar J, et al.Influence of smoking cessation on airway T lymphocyte subsets in COPD[J]. COPD, 2009,6(2):112-120.

[14] Roos-Engstrand E, Pourazar J, Behndig AF, et al. Expansion of CD4(+)CD25(+)helper T cells without regulatory function in smoking and COPD[J]. Respir Res, 2011,12:74.

[15] 张飘飘,凌亚豪,阎晓丹,等.阿胶对人工细颗粒物所致大鼠呼吸系统损伤的保护作用[J].癌变·畸变·突变,2017,29(5):364-351.

[16] 赵福东,董竞成,崔焱,等.阿胶对哮喘大鼠气道炎症及外周血Th1型/Th2型T辅助细胞因子的影响[J].中国实验方剂学杂志,2006,12(6):59-61.

猜你喜欢
阿胶亚群细胞因子
欢迎来到2060年!
欢迎来到2060年!
甲状腺切除术后T淋巴细胞亚群的变化与术后感染的相关性
抗GD2抗体联合细胞因子在高危NB治疗中的研究进展
阿胶的小脾气
急性心肌梗死病人细胞因子表达及临床意义
外周血T细胞亚群检测在恶性肿瘤中的价值
细胞因子在慢性肾缺血与肾小管-间质纤维化过程中的作用
阿胶没有驴皮该怪谁
疣状胃炎与T淋巴细胞亚群的相关研究进展